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ELISA檢測(cè)各方法一般操作過程
點(diǎn)擊次數(shù):820 更新時(shí)間:2024-06-24

     ELISA檢測(cè)是一種免疫檢測(cè)方法,通常用于測(cè)量生物樣品中的抗體或抗原,包括蛋白質(zhì)或糖蛋白。像其他免疫檢測(cè)法一樣,它們依靠抗體與目標(biāo)的結(jié)合來促進(jìn)檢測(cè)。

      通常情況下,ELISA檢測(cè)是在96孔板中進(jìn)行的,這種形式使其適合于一次篩選許多樣品。血清、血漿、細(xì)胞培養(yǎng)上清液、細(xì)胞裂解液、唾液、組織裂解液和尿液都是用于這些檢測(cè)的常見樣品類型,但理論上大多數(shù)液體樣品類型都可以使用。然而,重要的是要考慮到一些樣品類型可能包括抑制性因素,如共享相似抗原表位的緩沖液成分或可能損害目標(biāo)或檢測(cè)成分的蛋白酶等因素,這些因素可能干擾檢測(cè)的性能。

      有幾種不同的檢測(cè)形式,但都依賴于目標(biāo)本身或能夠捕獲目標(biāo)的抗體/抗原與包被板表面的結(jié)合。然后采用測(cè)定步驟,包括結(jié)合抗原,或常見的抗體,以使成功的結(jié)合被測(cè)定和量化,常見的是通過比色測(cè)定?,F(xiàn)在有四種主要的ELISA類型,直接法、間接法、夾心法和競(jìng)爭(zhēng)法。

      同樣的原理也適用于抗體的測(cè)定,只是抗原和一級(jí)抗體的作用相反。雖然不同類型的ELISA方案有差異,但大多數(shù)檢測(cè)都有一些應(yīng)該考慮一般操作過程。

1、板包被

大多數(shù)ELISA檢測(cè)步是將檢測(cè)的個(gè)成分與包被板結(jié)合。這通常是通過被動(dòng)吸附完成的,一個(gè)非特異性的過程,所以結(jié)果將取決于涂在包被板上的東西。

如果使用了含有抗原的樣品,那就需要一個(gè)具有選擇性的包被板,因?yàn)楦鞣N抗原都會(huì)結(jié)合,而不僅僅是那些感興趣的。然而,如果像用于抗體檢測(cè)的ELISA間接法那樣使用純化抗原,或像ELISA夾心法那樣使用捕獲抗體,那么我們已經(jīng)準(zhǔn)備了一個(gè)具有選擇性的包被板。

包被板的類型大多數(shù)是聚苯乙烯或聚苯乙烯衍生物,其具有不同的結(jié)合特性,這取決于目標(biāo)物質(zhì)和檢測(cè)的性質(zhì)。一些目標(biāo)物質(zhì),包括重度糖基化的蛋白質(zhì)、碳水化合物、DNA、脂類、短肽和有洗滌劑的蛋白質(zhì),是不能很好吸附的。在這些情況下,建議使用經(jīng)過處理允許共價(jià)連接到表面的包被板。

2、孵育

將試劑加入ELISA板后,必須進(jìn)行孵育,以便有時(shí)間進(jìn)行結(jié)合或反應(yīng)。每次孵育的溫度和時(shí)間將取決于檢測(cè)步驟和正在進(jìn)行的操作。通常在樣品應(yīng)用之后,與37℃下孵育1小時(shí)。

然而,像阻斷這樣的步驟可以在冰箱中過夜,測(cè)定過程中的孵育通常在室溫下進(jìn)行,時(shí)間短得多。

3、洗滌

洗板是在應(yīng)用在檢測(cè)每個(gè)組成部分之間,直到結(jié)果測(cè)定的一個(gè)重要步驟。溶液從孔中排空后,通常使用磷酸鹽緩沖鹽水-20(PBST)做為緩沖液清洗孔,以去除任何殘留的未結(jié)合抗原、抗體或試劑。

這可以用多通道移液器手工完成,或使用自動(dòng)洗板機(jī)。

不充分的清洗可能會(huì)導(dǎo)致高背景信號(hào),而過多的清洗會(huì)導(dǎo)致樣品信號(hào)低。不一致的清洗可能會(huì)導(dǎo)致整個(gè)板塊的不一致,從而導(dǎo)致不可靠的結(jié)果。

4、阻斷

在用蛋白質(zhì)包被ELISA板后,阻斷通常是必要的,以防止在接下來方案步驟中測(cè)定抗體的任何非特異性結(jié)合。

與檢測(cè)無關(guān)的混合蛋白被添加到板中并進(jìn)行孵育,占據(jù)任何可用的非特異性結(jié)合位點(diǎn)。常見的蛋白質(zhì)阻斷緩沖液選擇包括脫脂干乳、牛血清白蛋白(BSA)和酪蛋白。

另外,非離子洗滌劑,如Tween 20或Triton X-100,可作為阻斷劑使用,但不能像蛋白質(zhì)那樣提供永jiu性阻斷。無效的板塊阻斷會(huì)導(dǎo)致背景噪音增加,降低檢測(cè)的靈敏度和特異性。

5、抗體

實(shí)驗(yàn)性抗體是大多數(shù)ELISAs的基石,選擇正確的抗體至關(guān)重要,特別是在使用多種抗體的情況下。單克隆抗體和多克隆抗體都可以使用,它們都有各自的有點(diǎn)和缺點(diǎn)。單克隆抗體提供高特異性,但成本較高。另一方面,多克隆抗體可以在多個(gè)結(jié)合點(diǎn)與目標(biāo)結(jié)合,放大信號(hào)并提高靈敏度。

使用采用二級(jí)抗體的方法增加了額外的步驟,延長了檢測(cè)時(shí)間,增加了出錯(cuò)機(jī)會(huì),需要多優(yōu)化來找到合適的兼容抗體對(duì)。然而,使用多克隆二級(jí)抗體所帶來的靈敏度提高可能使其成為一種值得或必須的有效檢測(cè)方法發(fā)展方向。

6、測(cè)定

無論使用哪種ELISA類型,后一步都是測(cè)定步驟,常見的是利用酶介導(dǎo)的可見顏色變化化學(xué)反應(yīng),然后可以用紫外-可見分光光度法測(cè)量。

酶結(jié)合抗原或抗體被應(yīng)用到測(cè)試孔中,如果目標(biāo)存在,它就會(huì)與之結(jié)合。當(dāng)酶的適當(dāng)?shù)孜锉惶砑拥桨话迳蠒r(shí),它會(huì)引起顏色變化,與孔內(nèi)結(jié)合的目標(biāo)物的數(shù)量成正比。辣根過氧化物酶(HRP)是一種常用共軛物,一般與底物3,3',5,5'-四甲基聯(lián)苯胺(TMB)合作使用。底物在HRP的作用下變成藍(lán)色,然后在加入硫酸溶液后變成黃色,停止反應(yīng)。

然后可以用酶標(biāo)儀(在TMB加入終止液后,在450nm波段測(cè)定),這是一種紫外可見分光光度計(jì),來確定每個(gè)孔的吸光度值,并根據(jù)檢測(cè)設(shè)計(jì)進(jìn)行校正和計(jì)算,如減去空白孔平均值、技術(shù)重復(fù)平均值或與標(biāo)準(zhǔn)比率計(jì)算。


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